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Die Studierenden sind in der Lage, durch praktische Versuche die Zusammenhänge zwischen Krankheitsphänotyp, Persistenz, Prävalenz und Abundanz von phytopathogenen Mikroorganismen sowie deren direkten und indirekten Einfluss auf das Ökosystem und den

Menschen herzustellen. Dadurch können sie komplexe Zusammenhänge zwischen Menschen, Tieren, Pflanzen und ihrer gemeinsamen Umwelt erkennen und ihre Rolle in Bezug auf Nahrungssicherheit verstehen.

Das Praktikum vermittelt grundlegende und fortgeschrittene Methoden zur Untersuchung pflanzenpathogener Pilze. Im Fokus stehen experimentelle Ansätze zur Isolierung, Identifizierung und Charakterisierung von Pathogenen sowie die Analyse ihres Verhaltens unter variierenden Umweltbedingungen. Die Studierenden erwerben praktische Kompetenzen in der Diagnostik, Lebensmittelhygiene und phytopathologischen Forschung.

Thematische Schwerpunkte (Themen können variieren):

1. Koch-Henle-Postulat und Pathogenitätsnachweis

   • Anwendung der Koch’schen Postulate zur Verifizierung phytopathogener Pilze.
   • Experimentelle Schritte: Isolierung aus infiziertem Pflanzenmaterial, Reinfektion gesunder Wirte, Reisolierung und morphologische/genetische Bestimmung der Erreger.
   • Untersuchung der Wirtsspezifität: Vergleich des Infektionsverlaufs auf verschiedenen Pflanzenarten.

2. Einfluss von Umweltparametern auf das Wachstum von Pilzen und pilzähnlichen Protisten.

   • Systematische Analyse der Auswirkungen abiotischer Faktoren auf phytopathogene Pilze, zum Beispiel:
     • Temperatur: Wachstumskurven bei unterschiedlichen Inkubationstemperaturen.
     • Licht: Einfluss von Lichtqualität (Wellenlänge) und -quantität (Photoperiode).
     • Osmotischer Stress: Wachstum unter variierenden Salz- oder Zucker-Konzentrationen (z. B. NaCl, Saccharose).
     • Pflanzenschutzmittel: Testung fungizider Wirkstoffe (Dosis-Wirkungs-Beziehungen).
   • Quantifizierung von Wachstumsraten (Koloniedurchmesser, Biomasse) im Vergleich zu Kontrollbedingungen.

3. Isolierung von Endo- und Epiphyten

   • Methoden zur Differenzierung von Pilzen in/auf Pflanzengeweben:
     • Endophyten: Oberflächensterilisation, Gewebehomogenisierung, selektive Kultivierung.
     • Epiphyten: Abklatschverfahren, Waschmethoden, Mikroskopie.
     • obligat biotrophe Pathogene: Co-kultivierung mit dem Wirt. 
   • Identifizierung isolierter Stämme mittels morphologischer Merkmale und molekularbiologischer Techniken (z. B. PCR, Sequenzierung).

4. Lebensmittelhygiene und Phytopathologie

   • Qualitätskontrolle pflanzlicher Lebensmittel: Analyse fertig verpackter Produkte (z. B. Salate, Obst, Getreide) auf:
     • Pilzliche Kontaminationen (Schimmel, Hefen).
     • Mykotoxin-Belastung (z. B. Aflatoxine, Ochratoxin A) mittels Schnelltests oder ELISA.
     • Hygienestatus: Keimzahlbestimmung, Nachweis pathogener Pilze (z. B. Fusarium, Aspergillus).
   • Diskussion von Präventionsstrategien (Lagerung, Verarbeitung, HACCP-Konzepte).

Das Praktikum kombiniert klassische mikrobiologische Techniken mit modernen analytischen Verfahren. Die Studierenden arbeiten alleine oder in Kleingruppen und dokumentieren ihre Ergebnisse in Protokollen.

Praktische Techniken:

• Kultivierung und Isolierung:
  • Anzucht von Pilzen auf Nährmedien (z. B. PDA, MEA, Selektivnährmedien).
  • Oberflächensterilisation von Pflanzenmaterial (z. B. mit Ethanol, Natriumhypochlorit).
  • Reinkulturtechniken (Ausstrich, Verdünnungsreihe, Einzelsporenisolation).
  • Variation von Temperatur- und Lichtbedingungen.
  • Osmotische Stressversuche (modifizierte Nährmedien).
  • Tests auf den Einfluss von Fungiziden und Pestizid auf Mikroorganismen.
• Mikroskopie:
  • Lichtmikroskopie inkl Färbetechniken
  • Identifizierung anhand morphologischer Merkmale (Konidien, Hyphen, Fruchtkörper).
• Molekularbiologie:
  • DNA-Extraktion aus Pilzmyzel.
  • PCR-Amplifikation ausgewählter Gene .
• Routineanalytik:
  • Keimzahlbestimmung (Plattengussverfahren, Spatelverfahren).
  • Mykotoxin-Schnelltests (Lateral-Flow-Immunoassays).
  • Sensorische und mikrobiologische Qualitätsbewertung.

Datenanalyse:

• Statistische Analyse von Wachstumsdaten 
• Interpretation von Sequenzdaten 
• Wissenschaftliches Protokollieren (Versuchsaufbau, Ergebnisse, Diskussion).
• Präsentationstechniken .
• kritische Diskussion von Ergebnissen.

Immanent und Abschlussarbeit

Wird bekanntegegeben

keine

Allgemeine Vorbesprechung: 05.10.2026 um 08:15 Uhr, SR Biologie

Die Teilnahme an der Allgemeinen Vorbesprechung ist verpflichtend (Anwesenheit oder Vertretung). Plätze werden im Rahmen der Allgemeinen Vorbesprechung vergeben.

Vorbesprechung Wahlmodul: Die Vorbesprechung für dieses Wahlmodul findet am 05.10.26 von 14:15-14:45 Uhr im SR Biologie statt. Die Teilnahme an der Vorbesprechung (Anwesenheit oder Vertretung) ist für Studierende des Wahlmoduls verpflichtend.

Eine Teilnahme ist nur in Verbindung mit VU 718600 möglich.